Begrænsning-modifikationssystem

Restriktionsmodifikationssystemet  er et enzymatisk system af bakterier , der ødelægger fremmed DNA , der er kommet ind i cellen . Dens hovedfunktion er at beskytte cellen mod fremmed genetisk materiale, såsom bakteriofager og plasmider . Komponenterne i systemet er karakteriseret ved to typer aktivitet - methyltransferase (methylase) og endonuklease . Både individuelle proteiner og et protein, der kombinerer begge funktioner, kan være ansvarlige for hver af dem . [en]

Restriktionsmodifikationssystemet (SR-M) er specifikt for visse sekvenser af nukleotider i DNA, kaldet restriktionssteder . Hvis visse nukleotider i sekvensen ikke er methylerede , indfører restriktionsendonukleasen et dobbeltstrengsbrud i DNA'et (ofte med et skift af flere nukleotider mellem strengene), mens DNA-molekylets biologiske rolle krænkes. I det tilfælde, hvor kun en af ​​DNA-strengene er methyleret, sker der ingen spaltning; i stedet tilføjer methyltransferase methylgrupper til nukleotiderne i den anden streng. Denne specificitet af SR-M gør det muligt for bakterier selektivt at spalte fremmed DNA uden at påvirke deres eget. Normalt er alt DNA i en bakteriecelle enten fuldt methyleret eller fuldt methyleret langs kun én streng (umiddelbart efter replikation ). I modsætning hertil er fremmed DNA ikke methyleret og undergår hydrolyse. [en]

Opdagelseshistorie

Restriktionsmodifikationssystemer blev opdaget som et resultat af at studere de molekylære mekanismer af et fænomen kaldet værtskontrolleret restriktion .  Essensen af ​​fænomenet ligger i det faktum, at bakteriofager isoleret fra cellerne i en bakteriestamme formerer sig meget dårligt i en anden. Når de er inficeret med virale partikler isoleret fra den anden stamme, oplever cellerne i den første igen undertrykkelse af fagreproduktion, mens de i den anden stamme formerer sig normalt. I bakterier observeres således et system til at undertrykke reproduktionen af ​​bakteriofager. Virus, der stadig formåede at overvinde det, bliver resistente over for handlingen fra dette system. S. Luria og ML Human skrev i deres artikel fra 1952 [2] :

Ved at analysere forholdet mellem visse fager og visse mutanter af deres værtsbakterier stødte vi på et nyt fænomen: værtens genotyp , hvori virussen replikerer, påvirker fænotypen af ​​nye vira. Fænotypiske ændringer hæmmer virusets evne til at replikere i visse stammer. Dette er en ikke-permanent ændring, en vellykket reproduktionscyklus i en passende vært returnerer virussen til sin oprindelige form.

Originaltekst  (engelsk)[ Visskjule] Ved at analysere forholdet mellem visse fager og visse mutanter af deres bakterielle værter, er vi stødt på en ny situation: genotypen af ​​værten, hvori en virus reproducerer, påvirker fænotypen af ​​den nye virus. Den fænotypiske ændring undertrykker virusets evne til at reproducere i visse værter, men ikke i andre. Det er en forbigående ændring i den forstand, at en vækstcyklus i en passende vært returnerer virussen til sin oprindelige form.

Efterfølgende blev det vist, at bakteriofager isoleret fra forskellige stammer har den samme genotype, men et andet mønster af DNA-methylering, svarende til specificiteten af ​​CP-M af denne stamme. [3]

I 1978 blev Werner Arber , Daniel Nathans og Hamilton Smith tildelt Nobelprisen i fysiologi eller medicin "for deres opdagelse af restriktionsenzymer og deres anvendelse på molekylær genetik".

Nomenklatur

CP-M-enzymer er navngivet efter det system, der blev foreslået i 1973 af Smith og Nathans . [4] Navnet på et enzym begynder med et akronym på tre bogstaver, hvor det første bogstav er det samme som det første bogstav i slægtsnavnet , og resten er de to første bogstaver i den art , hvor enzymet blev fundet . Akronymet er skrevet med kursiv. Yderligere bogstaver tjener til at angive en bestemt stamme eller serotype . Romertal tildeles i den rækkefølge, som enzymer af en given type findes i en bestemt organisme. Yderligere bogstaver og tal er ikke i kursiv. For eksempel:

I trykte kilder er der betydelige forskelle i stavningen af ​​navnene på de samme enzymer (med hensyn til kursiv og tilstedeværelsen af ​​mellemrum). I 2003 foreslog en stor gruppe videnskabsmænd at systematisere klassificeringen og nomenklaturen af ​​restriktaser og methyltransferaser. [5] Det foreslås især at opgive brugen af ​​kursiv, hele navnet skal skrives uden mellemrum. Det anbefales, at navnene "restriktionsenzym" og "methylase" undgås, ved at bruge "restriktionsendonuklease" og "methyltransferase" i stedet; typen af ​​enzymatisk aktivitet er angivet med bogstaverne R (endonuklease) og M (methyltransferase) før akronymet - M.EcoRI og R.EcoRI.

Enzymatisk aktivitet

Endonuklease

Restriktionsendonukleaser introducerer brud i begge DNA-strenge og deler det i to dele. Afhængig af DNA-skæringens specificitet dannes der produkter, som har forskellige endestrukturer (se figur).

Methyltransferase

Restriktionsmodificerende methyltransferaser tilføjer methylgrupper til de nitrogenholdige baser af DNA-nukleotidrester. Methylering kan finde sted ved N5- og N6-positioner i adenin , N4 og C5-i cytosin . Den eneste donor af methylgrupper til DNA-methyltransferaser er S-adenosin-L-methionin . I de fleste tilfælde er kun den anden streng af semi-methyleret DNA methyleret, mens fuldstændigt umethyleret DNA spaltes på grund af endonukleaseaktiviteten af ​​CP-M.

Alle CP-M'er kræver Mg 2+ som en cofaktor. SR-M af den første og tredje type har brug for ATP , og den fjerde i GTP . S-adenosylmethionin kan ikke kun tjene som donor af methylgrupper, men også som en allosterisk regulator.

Klassifikation

På nuværende tidspunkt, baseret på underenhedsstrukturen, substratspecificiteten, enzymets krav til cofaktorer og arten af ​​DNA-spaltning [1] skelnes der mellem fire typer restriktionsmodifikationssystemer. [5] [6]

Type I

CRM'er af den første type er dannet af fem underenheder, der fungerer som en helhed. Underenheder er betegnet med forkortelsen Hsd (værtsspecificitetsdeterminant) og bogstavet, der svarer til funktionen (M- DNA-methyltransferase , R- restriktionsendonuklease , S-substratgenkendelse). CP-M af den første type er et kompleks af to HsdM, to HsdR og en HsdS. HsdR spalter phosphodiesterbindinger i DNA og har helicaseaktivitet . HsdM producerer methylering af adeninrester i restriktionsstederne ved det sjette nitrogenatom (m6A). HsdS giver genkendelse af visse DNA-regioner, der bestemmer specificiteten af ​​SR-M. [7]

Når der virker på umethyleret DNA, dominerer nukleaseaktivitet, de novo methylering kan udføres med ekstrem lav effektivitet, hvilket gør det muligt for bakteriofager at overvinde virkningen af ​​CP-M og erhverve evnen til at formere sig i en ny stamme (for flere detaljer, se ovenfor) ).

Restriktionsstedet er en asymmetrisk todelt sekvens: 5'-sekvensen på 3-5 specifikke nukleotider er adskilt af 6-8 nukleotider af enhver type fra den 3'-specifikke sekvens på 4-5 basepar. Efter at have genkendt målet, bevæger det enzymatiske kompleks sig langs DNA-molekylet og afvikler det ( helikaseaktivitet ), indtil det støder på en forhindring (for eksempel et andet protein). Der indføres således en pause i en stor vilkårlig afstand (tusindvis af basepar) fra restriktionsstedet. [7] Spaltning af CP-M type I DNA kræver ATP -hydrolyse . Dette skyldes det faktum, at der kræves energi for at bevæge sig langs DNA-molekylet og afvikle det efter genkendelse af CP-M-stedet. ATP udnyttes ved hjælp af den såkaldte. DEAD-motoren [7]  er en bevaret to-domænestruktur, der er karakteristisk for helicaser og nogle andre proteiner (for eksempel den molekylære motor af Sec-translokasen SecA). [otte]

Denne type er opdelt i fire familier (IA-D) baseret på genetisk komplementering, DNA-hybridisering og immun krydsreaktivitet (krydsreaktivitet med antistoffer ). [9]

Type II

I restriktionsmodifikationssystemer af denne type er methyltransferase- og nukleaseaktiviteter i de fleste tilfælde tilvejebragt af uafhængige proteiner. Endonukleaser skærer DNA i strengt definerede positioner inde i eller nær restriktionsstedet, som et resultat heraf har DNA-enderne ved brudstedet 3'-hydroxylgrupper og 5'-phosphatgrupper. På grund af disse egenskaber er endonukleaser af denne type (især IIP) meget udbredt i genteknologi . SR-M II kræver ikke ATP eller andre energikilder for at fungere. Aktive nukleaser kan eksistere som en monomer , homodimer eller homotetramer (for forskellige systemer). [5]

Methyltransferaser fungerer normalt som en monomer. Methylering sker ved den fjerde (N) eller femte (C) position i cytosinresten eller ved den sjette (N) - adenin (for forskellige systemer har hvert enkelt enzym streng specificitet). [5]

Der er flere undergrupper af type II SR-M, nogle systemer kan tilhøre flere af dem på én gang. [5]

Længden af ​​et anerkendt palindrom er i de fleste tilfælde 4, 6 eller 8 nukleotider. Spaltningen sker i en fast position inden for eller umiddelbart ved siden af ​​restriktionsstedet. Samtidig forårsager forskellige enzymer dannelsen af ​​både klæbrige og stumpe ender.

Type III

Type III SR-M'er inkluderer to underenheder (Res og Mod), der kombineres til en heterotetramer (Res 2 Mod 2 ) [7] med endonuklease- og methyltransferaseaktiviteter. Res-underenheden har helicaseaktivitet og kræver ATP - hydrolyse for at fungere . [6] I modsætning til type 1 CP-M kræver DNA-hydrolyse interaktion af to enzymkomplekser. De genkender to identiske restriktionssteder i modsatte orienteringer. Steder kan være umethylerede eller enkeltstrengede methylerede. [7]

Mod-underenheden kan fungere separat fra Res og fungere som en methyltransferase (m6A). Samtidig manifesteres nukleaseaktiviteten af ​​Res-underenheden kun, når den er i kompleks med Mod. [5]

Type IV

Type IV SR-M'er spalter kun modificeret DNA, der indeholder methylerede, hydroxymethylerede eller glycosylhydroxymethylerede baser. DNA-spaltning kræver hydrolyse af GTP . Endonukleaseaktivitet tilvejebringes af et enkelt polypeptid. Methyltransferaseaktivitet er fraværende [10] . Nukleaseaktivitet aktiveres allosterisk af S-adenosylmethionin . Restriktionsstedet er asymmetrisk og består af to adskilte dele. DNA-skæring sker i nærheden af ​​et af stederne. [6] [7]

Litteratur

  1. 1 2 3 Shchelkunov S. N. Genteknologi: Studievejledning. godtgørelse. — 2. udg., rettet. og yderligere - Novosibirsk: Sib. univ. forlag, 2004. - 496 med ISBN 5-94087-098-8
  2. Luria SE, Human ML En ikke-arvelig, værtsinduceret variation af bakterielle vira  (engelsk)  // Journal of Bacteriology  : journal. - 1952. - Oktober ( bind 64(4) ). - s. 557-569 . — PMID 12999684 .
  3. Arber W. , Dussoix D. Værtsspecificitet af DNA produceret af Escherichia coli. I. Værtsstyret modifikation af bakteriofag lambda. (engelsk)  // J Mol Biol  : journal. - 1962. - Juli ( bind 5 ). - S. 18-36 . — PMID 13862047 .
  4. Smith HO , Nathans D. Letter: En foreslået nomenklatur for bakterielle værtsmodifikations- og restriktionssystemer og deres enzymer. (engelsk)  // J Mol Biol.  : journal. - 1973. - December ( bind 81(3) ). - S. 419-423 . — PMID 4588280 .
  5. 1 2 3 4 5 6 7 Roberts RJ , Belfort M. , Bestor T. , Bhagwat AS , Bickle TA , Bitinaite J. , Blumenthal RM , Degtyarev SKh , Dryden DT , Dybvig K. , Firman K. , Gromova ES RI , Halford SE , Hattman S. , Heitman J. , Hornby DP , Janulaitis A. , Jeltsch A. , Josephsen J. , Kiss A. , Klaenhammer TR , Kobayashi I. , Kong H. , Krüger DH , Lacks S. , Marinus MG , Miyahara M. , Morgan RD , Murray NE , Nagaraja V. , Piekarowicz A. , Pingoud A. , Raleigh E. , Rao DN , Reich N. , Repin VE , Selker EU , Shaw PC , Stein DC , Stoddard BL , Szybalski W. , Trautner TA , Van Etten JL , Vitor JM , Wilson GG , Xu SY. En nomenklatur for restriktionsenzymer, DNA-methyltransferaser, homing-endonukleaser og deres gener. (eng.)  // Nucleic Acids Res.  : journal. - 2003. - April ( bind 31(7) ). - S. 1805-1812 . — PMID 12654995 .
  6. 1 2 3 Patrushev L. I. Kunstige genetiske systemer. — M.: Nauka, 2004. ISBN 5-02-032893-6
  7. 1 2 3 4 5 6 Dryden DT , Murray NE , Rao DN. Nukleosidtrifosfatafhængige restriktionsenzymer. (fr.)  // Nucleic Acids Res.  :magasin. — 2001 29(18). — Bd. 29(18) . - P. 3728-3741 . — PMID 11557806 .
  8. Papanikolau Y. , Papadovasilaki M. , Ravelli RB , McCarthy AA , Cusack S. , Economou A. , Petratos K. Structure of dimeric SecA, Escherichia coli preprotein translocase motor. (engelsk)  // J Mol Biol.  : journal. - 2007. - Bd. 366(5) . - S. 1545-1557 . — PMID 17229438 .
  9. Sistla S. , Rao D.N. S-Adenosyl-L-methionin-afhængige restriktionsenzymer. (neopr.)  // Crit Rev Biochem Mol Biol .. - 2004. - T. 39 (1) . - S. 1-19 . PMID 15121719 .
  10. Tock MR , Dryden DT. The biology of restriction and anti-restriktion  (neopr.)  // Curr Opin Microbiol.. - 2005. - August ( vol. 8 , nr. 4 ). - S. 466-472 . ISSN 1369-5274 . PMID 15979932 .

Se også

Links